如何提取小鼠肝臟細胞

本方法提供了一種簡單,經濟,快速的小鼠原代肝臟細胞分離方法,適用于一般實驗室的小鼠原代肝臟細胞分離以及進一步培養,為后續實驗提供基礎.以本方法所獲得的小鼠原代肝臟細胞進行進一步培養。

一、 (動物實驗室)先用酒精沖洗灌流系統,然后用蒸餾水再次沖洗(流速可稍快)

二、(細胞實驗室)制作凝膠培養皿(為了有助于細胞貼壁),0.1%gelation 移液器 2ml/皿,輕輕搖晃,讓relation充分鋪在培養皿底部,然后放入37℃,5%CO2的恒溫箱中1小時.
1.細胞操作臺是無菌區域,操作前要用酒精洗手,需要放入操作臺里的藥劑也要用酒精消毒,尤其是瓶口.
2.添加gelation順序為移液器吸取2mlgelation→打開培養皿蓋子→注入gelation→蓋上蓋子→輕搖

三、制作肝臟沖洗液和肝細胞分離液抽取SolutionⅠ40ml加入刻度試管中(兩個 40ml/試管)抽取SolutionⅡ30ml加入刻度試管中(兩個 30ml/試管);抽取SolutionⅡ70ml加入刻度試管中(兩個 70ml/試管)將SolutionⅡ30ml的兩個試管加入恒溫箱中預熱分別稱量12mg和5.4mg各兩份collagenase ,稱量蛋白酶12mg(使用敏感度高的測量器)

四、取小鼠,麻醉0.3ml苯巴比妥/只,觀察小鼠呼吸轉為淺快說明麻醉成功.剪取兩條長約250px絲線,置于凈水中備用將SolutionⅠ40ml溶液與灌流器相連,用剪刀剪開小鼠腹部毛皮,然后用手充分撕開毛皮,盡量暴露胸腹部,用剪刀剪開小鼠腹部肌肉,露出肝臟和肝靜脈,將之前備好的細線給小鼠肝靜脈打一個松散的活結備用,打開灌流器,將流量調低,用針管穿刺肝靜脈并固定,順手剪開小鼠股動脈(右側),觀察肝臟有限紅色逐漸變白然后呈淺黃色,且股動脈有液體流出,說明穿刺成功,調高灌流速度, SolutionⅠ40ml溶液灌流結束后,灌流SolutionⅡ70ml+12mgcollagenase溶液.
1.灌注SolutionⅡ70ml+12mgcollagenase是為了細胞間質的膠原蛋白,讓肝細胞松散,易于提取.灌注速度3-4ml/min
2.灌注SolutionⅡ70ml+12mgcollagenase成功后,小鼠肝臟會呈現類似與乳糜狀,用鑷子輕觸即破.
3.隨著灌流液量增加,小鼠麻醉藥也隨之排除體外,此時小鼠會出現蘇醒并抽搐.
4.灌流結束后,用剪刀摘取小鼠肝臟,放置于培養皿中(SolutionⅡ12mgcollagenase),在顯微鏡下去除膽囊和大血管,用鑷子輕輕剝離肝細胞,并用剪刀將未完全分離的肝組織剪碎.
5.4mgcollagenase+蛋白酶12mg+DNA酶0.06ml加入30ml SolutionⅡ溶液中混勻做成勻液,將剝離的肝細胞和組織倒入勻液中,置于37℃恒溫液箱中輕微振蕩消化處理30min.(加入DAN酶是因為DNA有粘著性，防止細胞聚集粘著)。
6.消化處理后的勻液中加入培養液終止消化反應，20g 5min離心分離（肝細胞較重離心后沉于試管底部，上清液大多是細胞外雜質），離心后去除上清液，然后用PBS（PH和滲透壓與細胞大致相同）沖洗1-2次，在培養液中加入雙抗，然后顯微鏡下細胞計數.
7.細胞計數的計數板上的四個正方形角落有很小的計數方格，細胞計數時分別計數那4個小方格，算出平均值X。細胞數=X*10/ml，每個培養皿中要加入5*10個細胞+1.5ml細胞培養液，顯微鏡下觀察細胞懸浮于培養基中，然后放入37℃,5%CO2的恒溫箱中培養。
8.LPS通常置于有菌的環境中，因此進行細胞培養前要先過濾。1000微克的LPS溶于10mlDMEM，過濾，然后加入30ml DMEM充分混勻。

五、對比
1.在培養皿上分類表明時間；
2.去除上清液；
3.PBS沖洗 2ml/皿 2次；
4.前兩組為對照組加普通培養液；
5.往后每組加2.5ml LPS混合液；
6. 放入37℃,5%CO2的恒溫箱中反應。
　
六、取細胞
1.按時間分類，抽取上清液；
2. PBS沖洗 2ml/皿 2次；
3. Lysis buffer （破壞細胞）100ml/皿；
4.cell刷酒精消毒→蒸餾水清洗→吸水紙吸干蒸餾水→刷取細胞；
5.微量移液器移出樣本；
6.回收細胞表明時間，密封，保存于-80℃冰箱中。